1. QUEN. QUEN | Sobrepeso e obesidade. www.who.int/gho/ncd/
risk_factors / overweight / en / index.html. Accedeu a 29 2015 de xaneiro.
2. Visscher PM, MA de Brown, McCarthy MI, Yang J. Cinco anos de descubrimento de GWAS.
Son J Hum Genet. 2012;90:7�24.
3. Locke AE, Kahali B, Berndt SI, Xustiza AE, Pers TH, Día FR, et al. Xenética
Os estudos do índice de masa corporal dan novas ideas para a bioloxía da obesidade. Natureza.
2015; 518: 197-206.
4. Ling C, Del Guerra S, Lupi R, R�nn T, Granhall C, Luthman H, et al.
Regulación epigenética de PPARGC1A en islotes diabéticos 2 de tipo humano e
efecto sobre a secreción de insulina. Diabetoloxía. 2008;51:615-22.
5. Van Dijk SJ, Molloy PL, Varinli H, Morrison JL, Muhlhausler BS. Epigenética
e a obesidade humana. Int J Obes (Londres). 2015;39:85-97.
6. O AL, Pan H, Chen L, Ong ML, Dogra S, Wong J, et al. O efecto de
xenotipo e ambiente in utero sobre variación interindividual no recén nacido
ADN metilomas. Res. do xenoma 2014;24:1064-74.
7. Olsson AH, Volkov P, Bacos K, Dayeh T, Hall E, Nilsson EA, et al. Genomewide
asociacións entre influencia de variación xenética e epixenética
expresión do ARNm e secreción de insulina nos illotes pancreáticos humanos. PLoS
Genet. 2014; 10: e1004735.
8. Grundberg E, Meduri E, Sandling JK, AK Hedman, Keildson S, Buil A, et al.
Análise global da variación de metilación do ADN no tecido adiposo dos xemelgos
revela ligazóns a variantes asociadas a enfermidades en elementos reguladores distales.
Son J Hum Genet. 2013;93:876�90.
9. Ronn T, Volkov P, Gillberg L, Kokosar M, Perfilyev A, Jacobsen AL, et al.
Impacto dos niveis de idade, IMC e HbA1c no ADN de todo o xenoma
patróns de expresión de metilación e ARNm no tecido adiposo humano
e identificación de biomarcadores epixenéticos en sangue. Hum Mol Genet.
2015; 24: 3792-813.
10. Waterland RA, Michels KB. Epidemioloxía epigenética do desenvolvemento
hipótese das orixes. Annu Rev Nutr. 2007;27:363-88.
11. McMillen IC, Rattanatray L, JA Duffield, Morrison JL, MacLaughlin SM, Gentili
S, et al. As orixes tempranas da obesidade posterior: vías e mecanismos. Adv
Exp Med Biol. 2009;646:71-81.
12. Ravelli A, van der Meulen J, Michels R, Osmond C, Barker D, Hales C, et al.
Tolerancia á glicosa en adultos tras a exposición prenatal á fame. Lancet.
1998; 351: 173-7.
13. McMillen IC, MacLaughlin SM, Muhlhausler BS, Gentili S, Duffield JL,
Morrison JL. As orixes do desenvolvemento da enfermidade ea saúde dos adultos: o papel
nutrición periconcepcional e fetal. Clin Base Farmacol Toxicol.
2008; 102: 82-9.
14. Zhang S, Rattanatray L, McMillen IC, Suter CM, Morrison JL. Periconceptional
nutrición e programación precoz dunha vida de obesidade ou adversidade. Prog
Biophys Mol Biol. 2011;106:307-14.
15. Bouret S, Levin BE, Ozanne SE. Control de interaccións xeo-ambiente
homeostase de enerxía e glicosa e as orixes do desenvolvemento da obesidade.
Physiol Rev. 2015;95:47�82.
16. Borengasser SJ, Zhong Y, Kang P, Lindsey F, Ronis MJ, Badger TM, et al.
A obesidade materna aumenta a diferenciación do tecido adiposo branco e altera
metilación do ADN a escala do xenoma en descendentes de rato macho. Endocrinoloxía.
2013; 154: 4113-25.
17. Gluckman PD, Lillycrop KA, Vickers MH, Pleasants AB, Phillips ES, Beedle AS,
et al. A plasticidade metabólica durante o desenvolvemento de mamíferos é direccional
dependente do estado nutricional precoz. Proc Natl Acad Sci US A.
2007; 104: 12796-800.
18. Godfrey KM, Sheppard A, Gluckman PD, Lillycrop KA, Burdge GC, McLean C,
et al. A metilación do promotor do xene epigenético está asociada ao nacemento
adiposidade posterior do neno. Diabetes. 2011;60:1528-34.
19. McMillen IC, Adam CL, Muhlhausler BS. Orixes tempranas da obesidade:
programación do sistema regulador do apetito. J Physiol. 2005;565(Pt 1):9.
20. Begum G, Stevens A, Smith EB, Connor K, Challis JR, Bloomfield F, et al.
Os cambios epigenéticos nas vías reguladoras da enerxía hipotalámica son
asociado coa desnutrición materna e o irmandamento. FASEB J.
2012; 26: 1694-703.
21. Ge ZJ, Liang QX, Hou Y, Han ZM, Schatten H, Sun QY, et al. Obesidade materna
ea diabetes pode causar alteración da metilación do ADN nos espermatozoides de
descendentes nos ratos. Reprod Biol Endocrinol. 2014; 12: 29.
22. Jousse C, Parry L, Lambert-Langlais S, Maurin AC, Averous J, Bruhat A, et al.
A desnutrición perinatal afecta á metilación e á expresión da leptina
xene en adultos: implicación na comprensión da síndrome metabólica.
FASEB J. 2011;25:3271�8.
23. Lan X, Cretney EC, Kropp J, Khateeb K, Berg MA, Penagaricano F, et al.
A dieta materna durante o embarazo induce a expresión xénica e o ADN
cambios de metilación nos tecidos fetais nas ovellas. Front Genet. 2013; 4: 49.
24. Li CC, Young PE, Maloney CA, Eaton SA, Cowley MJ, Buckland ME, et al.
A obesidade e diabetes materna inducen defectos metabólicos latentes e
cambios epixenéticos xeneralizados en ratos isoxénicos. Epixenética. 2013;8:602�11.
25. Lillycrop KA, Phillips ES, Jackson AA, Hanson MA, Burdge GC. Proteína dietética
A restrición das ratas embarazadas induce e suplementación de ácido fólico impide
modificación epixenética da expresión do xene hepático na descendencia. J Nutr.
2005; 135: 1382-6.
26. Radford EJ, Ito M, Shi H, Corish JA, Yamazawa K, Isganaitis E, et al. Utero
efectos. A desnutrición inúrica perturba o espermatozoide metiloma
e metabolismo intergeneracional. Ciencia. 2014; 345 (80): 1255903.
27. Suter M, Bocock P, Showalter L, Hu M, Shope C, McKnight R, et al.
Epigenómica: a exposición materna a graxa elevada en graxas interrompe
expresión dos xenes circadianos periféricos en primates non humanos. FASEB J.
2011; 25: 714-26.
28. Suter MA, Ma J, Vuguin PM, Hartil K, Fiallo A, Harris RA, et al. Utero
a exposición a unha dieta alta en graxas materna modifica o código epigenético da histona a
modelo murino. Am J Obs Gynecol. 2014;210:463 e1�463 e11.
29. Tosh DN, Fu Q, Callaway CW, McKnight RA, McMillen IC, Ross MG, et al.
Epigenética da obesidade programada: alteración na IUFG IGF1 de ratas
expresión do ARNm e estrutura das histonas en postnatal rápido ou retardado
crecemento de recuperación. Am F Physiol Gastrointest Physiol.
2010;299:G1023�9.
30. Sandovici I, Smith NH, MD Nitert, Ackers-Johnson M, Uribe-Lewis S, Ito Y,
et al. A dieta materna e o envellecemento alteran o control epigenético dun promoter
interacción co xene Hnf4a en illotes pancreáticos de ratos. Proc Natl
Acad Sci US A. 2011;108:5449�54.
31. Braunschweig M, Jagannathan V, Gutzwiller A, Bee G. Investigations on
Resposta epixenética transxeneracional baixo a liña masculina en porcos F2. PLoS
Un. 2012; 7, e30583.
32. Carone BR, Fauquier L, Habib N, Shea JM, Hart CE, Li R, et al. Paternalmente
reprogramación ambiental transgeneracional inducida de metabolismo
expresión xénica en mamíferos. Célula. 2010;143:1084-96.
33. Ost A, Lempradl A, Casas E, Weigert M, Tiko T, Deniz M, et al. Dieta paterna
define o estado da cromatina dos fillos e a obesidade interxeracional. Cela.
2014; 159: 1352-64.
34. Martínez D, Pentinat T, Rib S, Daviaud C, Bloks VW, Cebri� J, et al. No útero
a desnutrición en ratones macho programa o metabolismo lipídico hepático na segunda xeración
descendencia que implica metilación modificada do ADN de Lxra. Cell Metab.
2014; 19: 941-51.
35. Wei Y, Yang CR, Wei YP, Zhao ZA, Hou Y, Schatten H, et al. Paternalmente
herdanza transxeneracional inducida de susceptibilidade á diabetes en
mamíferos. Proc Natl Acad Sci US A. 2014;111:1873�8.
36. Grossniklaus U, Kelly WG, Kelly B, Ferguson-Smith AC, Pembrey M, Lindquist
S. herdanza epixenética transxeneracional: ¿como é importante? Nat Rev
Genet. 2013;14:228-35.
37. Pembrey M, Saffery R, Bygren LO. Respostas transxeneracionais humanas a
Experiencia de vida cedo: potencial impacto no desenvolvemento, saúde e
investigación biomédica. J Med Genet. 2014;51:563-72.
38. Wolff GL, Kodell RL, Moore SR, Cooney CA. Epigenética materna e metilo
os suplementos afectan á expresión dos xenes agutí en ratos Avy / a. FASEB J.
1998; 12: 949-57.
39. Jirtle RL, Skinner MK. Epigenómica ambiental e susceptibilidade á enfermidade.
Nat Rev Genet. 2007;8:253-62.
40. Morgan HD, Sutherland HG, Martin DI, Whitelaw E. Herdanza epigenética en
o locus agouti no rato. Nat Genet. 1999;23:314-8.
41. Cropley JE, Suter CM, Beckman KB, Martin DI. Liña xermánica epigenética
modificación do alelo murino A vy por suplementos nutricionais. Proc
Natl Acad Sci US A. 2006;103:17308�12.
42. Hoile SP, Lillycrop KA, Thomas NA, MA de Hanson, GC Burdge. Proteína dietética
A restricción durante o embarazo F0 nos ratos induce cambios transgeneracionais en
o transcriptoma hepático en descendencia feminina. PLoS One. 2011; 6, e21668.
43. Multhaup ML, Seldin MM, Jaffe AE, Lei X, Kirchner H, Mondal P, et al. Mousehuman
A análise epixenética experimental desemboca os obxectivos dietéticos e
responsabilidade xenética para fenotipos diabéticos. Metab celular. 2015;21:138�49.
44. Michels KB, Binder AM, Dedeurwaerder S, Epstein CB, Greally JM, Gut I, et al.
Recomendacións para o deseño e análise de todo o epixenoma
estudos de asociación. Métodos Nat. 2013;10:949-55.
45. Dayeh TA, Olsson AH, Volkov P, Almgren P, R�nn T, Ling C. Identificación de
CpG-SNPs asociados coa diabetes tipo 2 e a metilación diferencial do ADN
nos illotes pancreáticos humanos. Diabetoloxía. 2013;56:1036�46.
46. Relton CL, Davey Smith G. Aleatorización epigenética Mendeliana en dous pasos: a
estratexia para establecer o papel causal dos procesos epixenéticos nas vías
á enfermidade. Int J Epidemiol. 2012;41:161-76.
47. Liu Y, Aryee MJ, Padyukov L, Fallin MD, Hesselberg E, Runarsson A, et al.
Os datos de asociación en todo o epigenoma implican a metilación do ADN
intermediario de risco xenético na artrite reumatoide. Nat Biotechnol.
2013; 31: 142-7.
48. Yuan W, Xia Y, Bell CG, pero eu, Ferreira T, Ward KJ, et al. Un sistema integrado
análise epigenómica para os tipos de susceptibilidade á diabetes tipo 2 en monocigóticos
xemelgos. Nat Commun. 2014; 5: 5719.
49. Nitert MD, Dayeh T, Volkov P, Elgzyri T, Hall E, Nilsson E, et al. Impacto dun
exercitar a intervención sobre a metilación do ADN no músculo esquelético desde o primeiro grado
familiares de pacientes con diabetes tipo 2. Diabetes. 2012;61:3322�32.
50. Gagnon F, Assi D, Carrie A, Morange PE, Tr�gou�t DA. Validación sólida de
asociación de niveis de metilación no lugar do CPT1A con niveis plasmáticos de lípidos.
J Lipid Res. 2014;55:1189-91.
51. Demerath EW, Guan W, Grove ML, Aslibekyan S, Mendelson M, Zhou YH,
et al. Asociación de asociacións de epigenoma amplo (EWAS) de IMC, cambio de IMC e
A circunferencia da cintura en adultos afroamericanos identifica múltiples repetidos
loci. Hum Mol Genet. 2015: ddv161�.
52. Dick KJ, Nelson CP, Tsaprouni L, Sandling JK, Assi D, Wahl S, et al. ADN
metilación e índice de masa corporal: unha análise do xenoma. Lancet.
2014; 6736: 1-9.
53. Su S, Zhu H, Xu X, Wang X, Dong Y, Kapuku G, et al. Metilación do ADN
o xene LY86 está asociado coa obesidade, resistencia á insulina e
inflamación. Twin Res Hum Genet. 2014;17:183-91.
54. Clarke-Harris R, Wilkin TJ, Hosking J, Pinkney J, Jeffery AN, Metcalf BS, et al.
PGC1? a metilación do promotor no sangue aos 5-7 anos predice a adiposidade de
9 a 14 anos (EarlyBird 50). Diabetes. 2014;63:2528�37.
55. Guay SP, Brisson D, Lamarche B, Biron S, Lescelleur O, Biertho L, et al.
ADRB3 xene promotor metilación do ADN en sangue e visceral
o tecido está asociado con trastornos metabólicos nos homes. Epigenómica.
2014; 6: 33-43.
56. Agha G, Houseman EA, Kelsey KT, Eaton CB, Buka SL, Loucks EB. A preposidade é
asociado co perfil de metilación do ADN no tecido adiposo. Int J Epidemiol.
2014: 1-11.
57. Irvin MR, Zhi D, Joehanes R, Mendelson M, Aslibekyan S, Claas SA, et al.
Estudo da asociación en todo o epigenoma dos lípidos no sangue en xaxún na xenética de
Estudo da rede de medicamentos hipolipemiantes e dieta. Circulación. 2014;130:565-72.
58. Frazier-Wood AC, Aslibekyan S, DM Absher, Hopkins PN, Sha J, Tsai MY, et al.
A metilación no locus CPT1A está asociada coa subfracción de lipoproteínas
perfís. J Lipid Res. 2014;55:1324�30.
59. Pfeifferm L, Wahl S, LC Pilling, Reischl E, JK Sandling, Kunze S, et al. ADN
a metilación dos xenes relacionados cos lípidos afecta aos niveis de lípidos na sangue. Circ Cardiovasc
Genet. 2015.
60. Petersen AK, Zeilinger S, Kastenmöller G, Römisch-Margl W, Brugger M, Peters
A, et al. A epigenética coñece a metabolómica: unha asociación de todo o epigenoma
estudo dos trazos metabólicos do soro sanguíneo. Hum Mol Genet. 2014;23:534-45.
61. Hidalgo B, Irvin MR, Sha J, Zhi D, Aslibekyan S, Absher D, et al. Epigenomewide
estudo da asociación de medidas de xaxún en glicosa, insulina e HOMA-IR
no estudo da xenética dos medicamentos para reducir os lípidos e da rede de dieta. Diabetes.
2014; 63: 801-7.
62. Dayeh T, Volkov P, Sal� S, Hall E, Nilsson E, Olsson AH, et al. Todo o xenoma
Análise de metilación do ADN de illotes pancreáticos humanos do tipo diabético 2
e os doadores non diabéticos identifican xenes candidatos que inflúen na insulina
secreción. PLoS Genet. 2014; 10, e1004160.
63. Nilsson E, Jansson PA, Perfilyev A, Volkov P, Pedersen M, Svensson MK, et al.
Alteración da metilación do ADN e expresión diferencial de xenes que inflúen
metabolismo e inflamación no tecido adiposo de individuos con tipo 2
diabetes. Diabetes. 2014;63:2962-76.
64. Benton MC, Johnstone A, Eccles D, Harmon B, Hayes MT, Lea RA, et al. Unha análise da metilación do ADN no tecido adiposo humano revela modificacións diferenciais dos xenes da obesidade antes e despois do desvío e peso gástrico
perda. Xene. 2015;16:1�21.
65. Bateson P, Gluckman P. Plasticidade e robustez no desenvolvemento e
evolución. Int J Epidemiol. 2012;41:219-23.
66. Feinberg AP, Irizarry RA, Feinberg AP, Irizarry RA. Evolución da saúde e
medicina Coloquio de Sackler: variación epixenética estocástica como condución
forza de desenvolvemento, adaptación evolutiva e enfermidade. Proc Natl Acad
Sci US A. 2010;107(Suppl):1757-64.
67. Martino D, Loke YJ, Gordon L, Ollikainen M, MN de Cruickshank, Saffery R, et al.
Análise lonxitudinal en escala do xenoma da metilación do ADN en xemelgos desde o nacemento
a 18 meses de idade revela un rápido cambio epixenético nos primeiros anos da vida e no especifico de parellas
efectos da discordancia. Xenoma Biol. 2013; 14: R42.
68. Tobi EW, JJ Goeman, Monajemi R, Gu H, Putter H, Zhang Y, et al. ADN
as sinaturas de metilación ligan a exposición prenatal ao crecemento e fame
metabolismo. Nat Commun. 2014; 5: 5592.
69. Dominguez-Salas P, Moore SE, Baker MS, Bergen AW, Cox SE, Dyer RA, et al.
A nutrición materna na concepción modula a metilación do ADN humano
epiteleles metasables. Nat Commun. 2014; 5: 3746.
70. Quilter CR, Cooper WN, Cliffe KM, Skinner BM, Prentice PM, Nelson L, et al.
Impacto nos patróns de metilación dos fillos da diabetes gestacional materna
A moderación do crecemento mellitus e intrauterino suxire xenes comúns e
vías relacionadas co risco posterior de diabetes tipo 2. FASEB J. 2014: 1�12.
71. Morales E, Groom A, Lawlor DA, Relton CL. Sinaturas de metilación do ADN en
sangue do cordón umbilical asociado á ganancia de peso gestacional materno: resultados de
a cohorte ALSPAC. BMC Res Notes. 2014; 7: 278.
72. Ruchat SM, Houde AA, Voisin G, St-Pierre J, Perron P, Baillargeon JP, et al.
A diabetes mellitus gestacional afecta epigenética xenes predominantemente
implicados en enfermidades metabólicas. Epixenética. 2013;8:935�43.
73. Liu X, Chen Q, Tsai HJ, Wang G, Hong X, Zhou Y, et al. Materna
Índice de masa corporal previa á concepción e ADN do sangue de cordo descendente
metilación: exploración das orixes iniciais da enfermidade. Environ Mol
Mutáxeno. 2014;55:223�30.
74. Soubry A, Murphy SK, Wang F, Huang Z, Vidal AC, Fuemmeler BF, et al.
Os recentemente nados de pais obesos alteraron os patróns de metilación do ADN en
xenes impresos. Int J Obes (Londres). 2015;39:650�7.
75. Jacobsen SC, Br�ns C, Bork-Jensen J, Ribel-Madsen R, Yang B, Lara E, et al.
Efectos da alimentación excesiva de graxas a longo prazo no ADN de todo o xenoma
metilación no músculo esquelético de homes novos e sans. Diabetologia.
2012; 55: 3341-9.
76. Gillberg L, Jacobsen SC, R�nn T, Br�ns C, Vaag A. PPARGC1A DNA
metilación no tecido adiposo subcutáneo en suxeitos de baixo peso ao nacer
impacto de 5 días de sobrealimentación rica en graxas. Metabolismo. 2014;63:263-71.
77. Huang YT, Maccani JZJ, Hawley NL, Wing RR, Kelsey KT, McCaffery JM.
Patróns epixenéticos nos mantedores de perda de peso exitosos: un estudo piloto. Int J
Obes (Londres). 2015;39:865�8.
78. Barres R, Kirchner H, Rasmussen M, Yan J, Kantor FR, Krook A, N�slund E,
Zierath JR. Perda de peso tras a cirurxía de bypass gástrico na obesidade humana
remodela a metilación do promotor. Rep. celular 2013: 1�8.
79. Ahrens M, Ammerpohl O, von Sch�nfels W, Kolarova J, Bens S, Itzel T, et al.
Análise de metilación do ADN en enfermidades de fígado graxo non alcohólico
distintas sinaturas de enfermidade e remodelación despois da cirurxía bariátrica.
Metab celular. 2013;18:296-302.
80. Voisin S, Eynon N, Yan X, Bispo DJ. Exercita o adestramento e metilación do ADN
en humanos. Acta Physiol (Oxf). 2014;213:39-59.
81. Lindholm ME, Marabita F, Gomez-Cabrero D, Rundqvist H, Eksstr�m TJ,
Tegnér J, et al. Unha análise integradora revela unha reprogramación coordinada
Despois do epixenoma e do transcriptoma no músculo esquelético humano
formación. Epixenética. 2014;9:1557-69.
82. Denham J, O Brien BJ, Marques FZ, Charchar FJ. Cambios no leucocito
o metiloma eo seu efecto nos xenes cardiovasculares despois do exercicio.
J Appl Physiol. 2014: jap.00878.2014.
83. Rowlands DS, Page RA, WR Sukala, Giri M, SD de Ghimbovschi, Hayat I, et al.
As redes integradas multiomáticas conectan a metilación do ADN eo miRNA
plasticidade do músculo esquelético ao exercicio crónico da obesidade diabética tipo 2.
Physiol Genomics. 2014;46:747-65.
84. Horvath S, Erhart W, Brosch M, Ammerpohl Ou, von Schonfels W, Ahrens M,
et al. A obesidade acelera o envellecemento epigenético do fígado humano. Proc Natl Acad
Sci. 2014;111:15538�43.
85. Alm�n MS, Nilsson EK, Jacobsson JA, Kalnina I, Klovins J, Fredriksson R, et al.
A análise de todo o xenoma revela marcadores de metilación do ADN que varían segundo
tanto a idade como a obesidade. Xene. 2014.;548:61�7
86. Houseman EA, Molitor J, Marsit CJ. Axustes de mestura de células libres de referencia
na análise de datos de metilación do ADN. Bioinformática. 2014;30:1431�9.
87. Wells JC. Unha valoración crítica da hipótese de resposta adaptativa predictiva.
Int J Epidemiol. 2012;41:229-35.
88. Williams-Wyss O, Zhang S, MacLaughlin SM, Kleemann D, Walker SK, Suter
CM, et al. Número de embrións e desnutrición periconcepcional na
as ovellas teñen efectos diferenciales no epigenotipo adrenal, no crecemento e
desenvolvemento. Am J Physiol Endocrinol Metab. 2014;307:E141�50.
89. Zhang S, Rattanatray L, Morrison JL, Nicholas LM, Lie S, McMillen IC.
Obesidade materna e orixes tempranas da obesidade infantil: levantamento
os beneficios e os custos da perda de peso materna no periconcepcional
período para a descendencia. Exp Diabetes Res. 2011; 2011: 585749.
90. Zhang S, Williams-Wyss Ou, MacLaughlin SM, Walker SK, Kleemann DO, Suter
CM, et al. Desnutrición materna durante a primeira semana despois da concepción
resulta na diminución da expresión do ARNm do receptor de glucocorticoides na
ausencia de GR exón Xermes 17 na hipófise fetal a finais
xestación. J Dev Orig Heal Dis. 2013;4:391�401.
91. Lie S, Morrison JL, Williams-Wyss Ou, Suter CM, Humphreys DT, Ozanne SE,
et al. Os programas de desnutrición periconcepcional cambian na sinalización da insulina
moléculas e microRNAs no músculo esquelético en singleton e xemelgo fetal
ovellas. Biol Reprod. 2014; 90: 5.
92. Van Straten EM, van Meer H, Huijkman NC, van Dijk TH, Baller JF, Verkade
HJ, et al. A activación do receptor x de fígado fetal induce agudamente a lipogênese pero
non afecta á resposta lipídica no plasma a unha dieta rica en graxas nos ratos adultos. Am J
Physiol Endocrinol Metab. 2009;297:E1171�8.
93. Fernandez-Twinn DS, Alfaradhi MZ, MS Martin-Gronert, Duque-Guimarães
DE, Piekarz A, Ferland-McCollough D, et al. Baixa regulación de IRS-1 en
O tecido adiposo da descendencia de ratos obesos está programado de xeito cellautonomo
a través de mecanismos post-transcricionais. Mol Metab.
2014; 3: 325-33.
94. Waterland RA, Travisano M, Tahiliani KG. Hipermetilación inducida pola dieta en
o agutí viable amarelo non se herda transgeneracionalmente a través da femia.
FASEB J. 2007;21:3380�5.
95. Ge ZJ, Luo SM, Lin F, Liang QX, Huang L, Wei YC, et al. Metilación do ADN en
os ovocitos e o fígado das ratas femininas e os seus descendentes: efectos da dieta alimentaria con alto contido de graxa
obesidade. Env Heal Perspect. 2014;122:159-64.
96. Ollikainen M, Ismail K, Gervin K, Kyllnen A, Hakkarainen A, Lundbom J, et al.
Alteracións da metilación do ADN sanguíneo en todo o xenoma nos elementos reguladores
e rexións heterocromáticas nos xemelgos monocigóticos discordantes para a obesidade
e graxa do fígado. Clin Epigenética. 2015; 7:1-13.